1、目的:構建幽門螺桿菌(Helicobacter pylori,H.pylori)cag PAI中基因cagX缺失株,探討該基因對cagY、cagW、cagN基因表達的影響、在CagA轉運過程中的作用及對細胞GES-1 IL-8 mRNA表達能力的影響；提取并純化CagX重組蛋白,免疫BALB／c小鼠,制備多克隆抗體,明確CagX的亞細胞定位及與尿素酶、過氧化氫酶等的關系。為深入探討幽門螺桿菌的致病機制研究奠定基礎。
　　 方法:

2、
　　 1.根據(jù)GenBank中收錄的H.pylori26695全基因組序列,設計擴增cagX基因缺失株的同源臂引物,用PCR方法從H.pylori NCTC11637基因組DNA中擴增cagX基因同源臂片段,將克隆片段連至pMD18-T載體,轉化大腸桿菌DH5a,再將片段定向插入含卡那抗性pBlueKM40載體中,經(jīng)酶切鑒定分析,將自殺質粒命名為pBlueKM40-△cagX；
　　 2.構建好的自殺質粒與H.pylo

3、ri11637轉入電擊杯,利用同源重組原理,構建cagX基因缺失株,自殺質粒電擊轉化進入幽門螺桿菌,通過抗生素平板進行傳代篩選,通過PCR方法驗證cagX基因缺失株H.pylori11637△cagX的獲得,提取cagX基因缺失前后細菌總RNA,逆轉錄為cDNA,以cDNA為模板PCR檢測基因cagY,cagW,cagN的表達；
　　 3.將cagX基因缺失株和野生株與正常胃上皮細胞GES-1進行共培養(yǎng),然后采用Western

4、blot的方法檢測H.pylori轉運CagA蛋白的能力,提取細胞總RNA,采用實時熒光定量PCR檢測IL-8 mRNA的表達；
　　 4.將原核表達的CagX蛋白用Ni2+-NTA柱進行分離純化,純化的蛋白CagX與弗氏佐劑充分乳化后,免疫BALB／c小鼠,制備多克隆抗體,酶聯(lián)免疫吸附試驗(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)檢測血清中抗體效價；
　　 5.收集H.pylor

5、i,重懸并裂解菌體,收集細菌總蛋白,經(jīng)超高速離心分離得到菌體各組分蛋白,包括周質間隙蛋白、胞質蛋白及內外膜蛋白,利用Western Blot法檢測CagX蛋白的亞細胞定位；細菌總蛋白再與protein A／G plus agarose珠子混合,利用CagX抗體分離出相關蛋白,SDS-PAGE分析與CagX相關的蛋白；
　　 結果:
　　 1.經(jīng)過PCR及與載體連接,成功構建了幽門螺桿菌cagX基因的自殺質粒pBlueKM

6、40-△cagX,經(jīng)電擊轉化抗生素篩選獲得了cagX基因的缺失株。
　　 2.提取H.pylori野生株及cagX基因缺失株總RNA,逆轉錄為cDNA,并以其為模板檢測cagX上下游基因cagW、cagT及伴侶蛋白cagN基因表達變化,結果顯示cagX基因缺失后,上下游基因表達量均受到影響,而cagN基因表達并沒有變化。
　　 3.將野生株與cagX基因缺失株分別與正常胃上皮細胞GES-1共培養(yǎng)后,Westernblot

7、檢測結果發(fā)現(xiàn),cagX基因缺失株處理組中未檢測到的CagA的轉運,而野生株中CagA轉運成功。
　　 4.野生株與cagX基因缺失株分別與正常胃上皮細胞GES-1共培養(yǎng)后,提取細胞的總RNA逆轉錄成cDNA后,RT-PCR檢測細胞因子IL-8mRNA的表達,結果發(fā)現(xiàn)cagX基因缺失后IL-8mRNA表達受到影響；
　　 5.cagX-pET32a原核表達重組質粒,在濃度1mmol／L IPTG,溫度30℃,誘導時間4h條

8、件下誘導,利用Ni2+-NTA柱進行分離純化；純化的CagX蛋白免疫BALR／c小鼠,獲得CagX融合蛋白多克隆抗體,效價為1:3.2×105；Western Blot結果顯示CagX蛋白定位于菌體內外膜；免疫共沉淀及質譜結果發(fā)現(xiàn),CagX與尿素酶、過氧化氫酶等有關。
　　 結論:成功構建了cagX基因自殺質粒及缺失株,與野生株比較,cagX的缺失影響其上下游基因cagY.cagW的表達,但對cagN的表達沒有影響；在與正常胃上