1、目的：
　　 （1）探討體外分離、培養(yǎng)大鼠骨髓基質細胞（MSCs）的方法；
　　 （2）建立Neuritin體外誘導大鼠MSCs分化為神經元樣細胞的最佳實驗條件；
　　 （3）通過觀察Neuritin誘導后骨髓源性神經元樣細胞的形態(tài)以及標志物指標，評價Neuritin 誘導MSCs分化為神經元樣細胞的作用。
　　 方法：
　　 （1）采用全骨髓貼壁篩選法分離、培養(yǎng)、純化大鼠MSCs；
　　

2、 （2）利用免疫熒光技術檢測大鼠MSCs表達表面標志物CD44/CD29/CD90/CD34/CD45的情況；
　　 （3）分別于6小時、24小時、48小時、72小時，檢測不同濃度Neuritin誘導的骨髓源性神經元樣細胞的陽性率和細胞活力，確立Neuritin誘導大鼠MSCs分化為神經元樣細胞的最佳實驗條件；
　　 （4）免疫熒光技術和Western blot技術檢測骨髓源性神經元樣細胞中神經細胞標志物(NSE)、神經

3、細胞樹突標記物(MAP-2)、星形膠質細胞標志物（GFAP）的定位和表達水平；
　　 結果：
　　 （1）應用全骨髓貼壁篩選法，在本實驗室培養(yǎng)條件下，建立了簡單、高效的MSCs的培養(yǎng)和分離方法；
　　 （2）MSCs免疫熒光結果顯示：在本實驗室條件下培養(yǎng)的MSCs表達MSCs表面標志物CD29、CD44和CD90，不表達造血干細胞的表面標記物CD34、CD45。
　　 （3）不同濃度Neuritin誘導M

4、SCs6小時、24小時、48小時、72小時，神經元樣細胞陽性率和細胞活力檢測結果顯示：0.25μg/ml組神經元樣細胞陽性率均明顯低于0.5μg/ml組，而0.5μg/ml組以上隨著Neuritin濃度增高，神經元樣細胞陽性率而呈下降趨勢，0.5μg/ml在誘導后24小時神經元樣細胞陽性最高；細胞活力隨時間延長而呈下降趨勢，24小時誘導組活細胞率均大于82％，其中0.25μg/ml、0.5μg/ml、1.0μg/mlNeuritin組細

5、胞活力大于對照組。故0.5μg/ml Neuritin誘導大鼠骨髓基質細胞24小時，其誘導效果最佳。
　　 （4）0.5μg/ml Neuritin誘導MSCs24小時后的骨髓源性神經元樣細胞免疫熒光和Western Blot結果顯示：和對照組比較誘導組細胞定位于胞漿的神經細胞標志物（NSE）、神經細胞樹突標記（MAP-2）均有表達，定位于胞漿的星形膠質細胞標志物GFAP沒有表達；
　　 結論：
　　 （1）在本