1、目的:
　　將野生型XPD基因通過質粒轉入人肝癌細胞HepG2中,再加入p53抑制劑Pifithrin-α(PFT-α),觀察基因XPD、p53、Ets-1的表達變化和對細胞增殖活力的影響。
　　方法:
　　1、復蘇購買于美國模式菌種收集中心的人肝癌細胞HepG2,采用含有10％胎牛血清(FBS)的DMEM培養(yǎng)液培育、傳代、凍存菌種;2、將含有pEGFP-N2空載質粒(N2質粒)(從美國Clontech公司購買)和pE

2、GFP-N2-XPD重組質粒(XPD質粒)(由本實驗室構建)的JM-109大腸桿菌的菌液,分別進行搖菌擴增;3、使用質粒提取試劑從菌液中分別提取N2質粒、XPD質粒;4、設置6個實驗組,1組:空白對照組、2組:脂質體對照組、3組:pEGFP-N2組、4組:pEGFP-N2-XPD組、5組:pEGFP-N2-XPD+Pifithrin-α組、6組:Pifithrin-α組。5、使用瞬時轉染技術,將質粒轉染至細胞中,以空白組做對照,利用熒光

3、顯微鏡,察看細胞中綠色熒光蛋白的表達,24h后加入p53抑制劑Pifithrin-α(PFT-α),在孵育24h后收集細胞;6、提取HepG2細胞總RNA,經(jīng)過逆轉錄為cDNA,用逆轉錄-聚合酶鏈反應(RT-PCR)檢測細胞中XPD、p53、Ets-1的mRNA表達變化;7、提取細胞總蛋白,用蛋白印記法(Western blot)檢測XPD、p53、phospho-p53(ser-15)、Ets-1蛋白表達的變化。8、使用四甲基偶氮唑鹽

4、比色法(MTT)觀察HepG2細胞增殖的活力,流式細胞儀檢測HepG2細胞周期變化。
　　結果:
　　1、轉染N2空載質粒和XPD重組質粒后,在綠色熒光顯微鏡下,細胞表達出大量綠色熒光。2、利用RT-PCR方法檢測mRNA表達,轉染XPD重組質粒后,與空白對照組相比,XPD、p53的mRNA表達水平上升(P<0.01),Ets-1表達下降(P<0.01);在加入Pifithrin-α(PFT-α)后,與pEGFP-N2-XP

5、D重組質粒組比較,Ets-1表達出現(xiàn)部分上升(P<0.01),XPD、p53沒有明顯變化。3、使用Western blot檢測蛋白表達,轉染XPD重組質粒后,與空白對照組相比, XPD、p53、p-p53蛋白表達水平增加(P<0.01),Ets-1蛋白水平下調(P<0.01);加入Pifithrin-α后,與pEGFP-N2-XPD組比較,p-p53蛋白表達明顯下降,Ets-1出現(xiàn)上升(P<0.01),而XPD、p53沒有明顯變化。4、

6、MTT法觀察細胞,將XPD質粒轉染至細胞后,增殖能力下降,加入Pifithrin-α(PFT-α)后出現(xiàn)部分上升(P<0.01)。5、流式細胞儀檢測細胞周期顯示,轉染XPD質粒后,HepG2細胞進入S期發(fā)生阻滯,停滯在G1期,加入PFT-α后阻滯作用減弱。
　　結論:
　　將野生型XPD基因轉染至HepG2細胞中,促使p53表達上調,同時抑制了原癌基因Ets-1的表達;加入p53抑制劑后,這種作用被部分逆轉了,可以認為XPD